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EZ Trans細胞轉染液-說明書

發(fā)布時間:2016/8/1      點擊次數:3648

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EZ Trans細胞轉染液

C4058L1080

1mL

4

200

EZ Trans細胞轉染液

C4058L1082

50mL

4

1800

EZ Trans細胞轉染液

C4058L1084

500mL

4

3500

產品描述:

細胞轉染液(核心成分為線性聚乙烯亞胺,也稱作LPEI),是新一代的轉染試劑,帶正電的聚合物與核酸帶負電的磷酸基團 形成帶正電的復合物后與細胞表面帶負電的蛋白多糖相互作用,并通過胞吞作用進入細胞。除了具有陽離子脂質體(如:Lipo2000,3000)的轉染效率高,操作簡單,適用范圍廣,重復性好等特點外,還具有在體內,轉染效率高,細胞毒性低等特點。

EZ Trans是一種具有較高的陽離子電荷密度的有機大分子,每相隔二個碳個原子都是質子化的氨基氮原子,使得聚合物網絡在任何pH下都能充當有效的“質子海綿”體。其轉染性能好于樹枝狀聚合物,而且它的細胞毒性低。

使用方法:

瞬時轉染方法

1. 接種細胞:轉染前一天,用膠原酶消化細胞并計數(不建議用胰酶)。調整細胞濃度,將細胞鋪入細胞培養(yǎng)的器皿,每個孔置入的細胞量應能使轉染時細胞匯合度達到 70~80%。

2. 準備 DNA-PEI 復合物: DNA、EZ Trans 試劑和稀釋劑在進行以下步驟前需先使其升至室溫。依據下表所示,用 Opti-MEM ITM(Invitrogen)或其他適合的無蛋白培養(yǎng)基稀釋適量 DNA。用同樣的培養(yǎng)基稀釋EZ Trans 試劑。每 1 μg DNA 需用2-5 μL EZ Trans轉染試劑。一邊輕輕渦旋裝有 DNA 溶液的試管,一邊將稀釋的EZ Trans轉染試劑滴加至試管中(注意:請勿顛倒添加順序)。充分混勻后,室溫靜置 10~25 min 以形成DNA-PEI復合物。當溶液體積較大時,請用圓底聚丙烯管,例如 Falcon 5 mL /14 mL 離心管。

3. 轉染細胞:直接向每個孔中加入 DNA-PEI復合物并輕輕渦旋培養(yǎng)板/培養(yǎng)皿。在無血清條件下轉染時,去除生長培養(yǎng)基,替換成無血清培養(yǎng)基,然后滴DNA-PEI復合物。轉染 3 h 后,添加1/2體積的包含 30%血清的生長培養(yǎng)基。

4. 孵育細胞和分析結果:在 CO2培養(yǎng)箱中 37℃下孵育細胞至可以分析檢測。轉染后zui快 7h 即可檢測到轉入基因的表達。請自行確定檢測時間。?

穩(wěn)定轉染方法

1. 接種細胞:轉染前一天,用胰酶消化細胞并計數。調整細胞濃度,將細胞鋪入細胞培養(yǎng)的器皿,總體積如表 1 所示,每個孔置入的細胞量應能使轉染時細胞匯合度達到 70~80%。

2. 準備 DNA-PEI 復合物: DNA、PEI 試劑和稀釋劑在進行以下步驟前需先使其升至室溫。依據表 1 所示,用 Opti-MEM ITM(Invitrogen)或其他適合的無蛋白培養(yǎng)基稀釋適量 DNA。用同樣的培養(yǎng)基稀釋PEI 試劑。每 1 μg DNA 需用2-5 μL EZ Trans轉染試劑。一邊輕輕渦旋裝有 DNA 溶液的試管,一邊將稀釋的EZ Trans轉染試劑滴加至試管中(注意:請勿顛倒添加順序)。充分混勻后,室溫靜置 10~25 min 以形成 DNA-PEI復合物。當溶液體積較大時,請用圓底聚丙烯管,例如 Falcon 5 mL /14 mL 離心管。

3. 轉染細胞:直接向每個孔中加入 DNA-PEI復合物并輕輕渦旋培養(yǎng)板/培養(yǎng)皿。在無血清條件下轉染時,去除生長培養(yǎng)基,替換成無血清培養(yǎng)基,然后滴DNA-PEI復合物。轉染 3 h 后,添加½體積的包含 30%血清的生長培養(yǎng)基。

4. 孵育細胞和分析結果:在 CO2培養(yǎng)箱中 37℃下孵育細胞至可以分析檢測。轉染后zui快 7h 即可檢測到轉入基因的表達。

5.轉染 24 h 后,將細胞傳代至新鮮的生長培養(yǎng)基中(將細胞稀釋 10 倍以上),在 CO2培養(yǎng)箱中 37℃孵育隔天。第二天加入與轉染抗性基因相匹配的篩選藥物。約 1~2 周可篩選到耐藥性克隆,在這期間需經常更換含篩選藥物的生長培養(yǎng)基。

運輸與保存方法:

常溫運輸,4℃保存,保質期12個月。

使用注意事項:

質粒質量:請務必使用高質量轉染級無內毒素質粒。通過 260 nm 光吸收測定 DNA 濃度,260 nm / 280 nm 比值確定 DNA 純度(比值應該在 1.8~2.0 的范圍之內)。如有可能,請通過瓊脂糖凝膠電泳檢測質粒的完整性。

細胞條件:使用適當保存和經常傳代的健康細胞。確保培養(yǎng)基沒有被細菌、真菌或支原體污染。如果細胞是近期復蘇的液氮凍存細胞,請在轉染前至少傳代兩次。建議使用GIBCO或者李記生物的胎牛血清培養(yǎng)細胞。?

特別提醒:

1. 對于某些類型的細胞如 HEK-293、HEK293T、NIH/3T3 和 COS 細胞,在轉染前兩天鋪板可顯著提高轉入基因的表達水平。如果選擇轉染前兩天鋪板,可適當降低鋪板密度,以確保轉染時細胞的匯合度仍為 70~80%。

2. 對于接觸抑制敏感的細胞,可適當降低鋪板密度。

3. 即使在有蛋白(如 10%的血清)存在的情況下,DNA-PEI復合物仍能轉染細胞,但是 DNA-PEI復合物必須在無蛋白存在的條件下形成。

4. 對大多數細胞來而言,每 1 μg DNA 使用 3.0 μLEndoFectinTM 試劑都能獲得較高轉染效率。使用者也可嘗試每 1 μg DNA 使用 1~4 μL 體積線性PEI轉染試劑進行優(yōu)化。

附:幾種細胞轉染方法比較

幾種細胞轉染方法(試劑)特點比較表

轉染方法

原理

主要應用

特點

陽離子聚合物
EZ Trans

帶正電的聚合物與核酸帶負電的磷酸基團 形成帶正電的 復合物后與細胞表面帶負電的蛋白多糖相互作用,并通過胞吞作用進入細胞。

穩(wěn)定轉染

瞬時轉染

所有細胞

除了具有陽離子脂質體的轉染效率高,操作簡單,適用范圍廣,重復性好等特點外,還具有在體內,轉染效率高,細胞毒性低等特點,是新一代的轉染試劑。

陽離子脂質體法

帶正電的脂質體與核酸帶負電的磷酸基團形成復合物,然后脂質體上剩余的電核與細胞膜上的唾液酸殘基的負電 核結合;另一種解釋是通過細胞是內吞作用而被進入細胞。(若DNA濃度過高,中和脂質體表面電核,而降低了與細胞的結合能力)

穩(wěn)定轉染

瞬時轉染

所有細胞

使用方法簡單,可攜帶大片段DNA,通用于各種類型的裸露DNA或RNA,能轉 染各種類型的細胞,沒有免疫原性。雖在體外基因轉染 中有很高的效率,但在體 內,能被血清清除,并在肺組織內累積,誘發(fā)強烈的抗炎反應,導致高水平的毒性,這在很大程度上限制了 其應用

DEAE-葡聚糖法

帶正電的DEAE-葡聚糖與核酸帶負電的磷酸骨架相互作用形成的復合物被細胞內吞

瞬時轉染

相對簡便、重復比磷酸鈣好,但對細胞有一定的毒副 作用,轉染時需除血清且一 般只用于BSC-1,CV-1,COS 細胞系

磷酸鈣法

磷酸鈣DNA復合物吸附細胞膜被細胞內吞

穩(wěn)定轉染

染瞬轉染

不適用于原代細胞(所需的DNA濃度較高),操作簡 便但重復性差,有些細胞不 適用  細胞建議用CSCL梯度離心,轉染是拷貝數較多

逆轉錄病毒(RNA)

通過病毒中膜糖蛋白和宿主細胞表面的受 體相互作用而 進入宿主細胞,之后反轉入酶 啟動合成DNA并隨機整合到宿主基因組中

穩(wěn)定轉染

特定宿主細胞

可用于難轉染的細胞、原代細胞,體內細胞等,但攜 帶基因不能太大(<8kb), 細胞需處分裂期,需考慮安 全因素

腺病毒

(雙鏈 DNA)

先和細胞表面 的受體結合,繼 而在αv整合 素介導下被細 胞內吞

瞬時轉染

特定宿主細胞

可用于難轉染的細胞,需考慮安全因素

Biolistic顆粒傳遞法

(基因槍粒子轟擊法)

將DNA用顯微重金屬顆粒沉 淀,再將包被好 的顆粒用彈道 裝置投射入細 胞,DNA在胞內逐步釋放,表達

瞬時性轉染

穩(wěn)定轉染

可用于:人的表皮細胞, 纖維原細胞,淋巴細胞系以 及原代細胞

顯微注射法

用顯微操作將 DNA直接注入靶 細胞核

穩(wěn)定轉染

瞬時轉染

轉染細胞數有限,多用于工程改造或轉基因動物的 胚胎細胞

電穿孔法

高脈沖電壓破 壞細胞膜電位,DNA通過膜上形 成的小孔導入

穩(wěn)定轉染

瞬時轉染

所有細胞

適用性廣,除了質粒外,還可轉染大的基因組 (>65kb)但細胞致死率高, DNA和細胞用量大,  需根 據不同細胞類型優(yōu)化電穿 孔實驗條件,拷貝數較少 1-20

 


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